Valoración de la tasa de cicatrización de una úlcera aguda en ratas Sprague-Dawley, mediante la aplicación de células madre mesenquimatosas autólogas, obtenidas del tejido adiposo

Autores/as

  • Fernando Zeledón Sánchez Universidad de Ciencias Médicas
  • Édgar Méndez Jiménez Universidad de Ciencias Médicas
  • Jessica Arroyo Hernández Universidad de Ciencias Médicas
  • Silvia Castro Piedra Universidad de Ciencias Médicas
  • Adriana Suárez Urhan Universidad de Costa Rica
  • Marco Alvarado Aguilar Universidad de Costa Rica
  • Orlando Morales Matamoros Universidad de Ciencias Médicas

DOI:

https://doi.org/10.51481/amc.v60i1.989

Palabras clave:

células madre derivadas de tejido adiposo, úlcera, cicatrización, tejido adiposo

Resumen

Objetivo: se diseñó un estudio que evaluara la tasa de cicatrización cutánea en úlceras agudas en ratas Sprague-Dawley después de recibir la administración de células madre mesenquimatosas derivadas de tejido adiposo.

Métodos: al primer grupo, denominado células madre (CM), se le administró células mesenquimatosas derivadas de tejido adiposo inyectadas, tanto periulcerosa como intraulcerosa. El segundo grupo, denominado neobol (N), recibió tratamiento con neobolR tópico, cuyo principio activo es el clostebol. El tercer grupo, denominado control (C), fue sometido a la misma manipulación quirúrgica que los dos grupos anteriores, pero no recibió ningún tipo de tratamiento. Después de realizar una úlcera aguda en el dorso de las ratas y recibir el tratamiento respectivo, se evaluó la tasa de cicatrización (día 1 de la úlcera – día X úlcera) / día 1 de la úlcera en todos los grupos.

Resultados: se extrajo un promedio de 1,22 ± 0,46 g de muestra y se aislaron 3,5 x 105 células, con un inóculo promedio de 2,4 x 104 y una viabilidad del 95,5%. La positividad para el antígeno CD29 mediante citometría de flujo fue del 96,5%. El análisis histológico realizado a los 7 días posteriores a la cicatrización clínica, demostró que el grupo de CM presentó la combinación de mayor vascularización y formación de epitelio, así como mayor porcentaje de cicatrización en relación con el grupo N (H(1)=5,61; p < 0,01) y C (H(1)=10,47; p < 0,001).

Conclusión: el estudio sugiere que las células madre derivadas del tejido adiposo aumentan la tasa de cicatrización.

 

Citas

Ko SH, Nauta A, Wong V, Glotzbach J, Gurtner GC, Longaker MT. The Role of Stem Cells in Cutaneos Wound Healing: What Do We Really Know?. Plast. Reconstr. Surg. 2011;127 (Suppl.): 10S.

Cherubino M, Rubin JP, Miljkovic N, Kelmendi-Doko A, Marra KG. AdiposeDerived Stem Cells for Wound Healing Applications. Ann Plast Surg. 2011;66:210-215.

Hanson, SE, Bentz ML, Hematti P. Mesenchymal Stem Cell Therapy for Nonhealing Cutaneous Wounds. Plast. Reconstr. Surg. 2010;125:510.

Torres FC, Rodrigues CJ, Stocchero IN, Ferreira MC. Stem Cells from the fat tissue of Rabbits: An easy-to find Experimental Source. Aesth Plast Surg. 2007;31:574-578.

Fraser, JK, Schreiber R, Strem B, Zhu M, Alfonso Z, Wulur I, et al. Plasticity of human adipose stem cells toward endothelial cells and cardiomyocites. Nature. 2006;3:33-37.

Zuk PA, Zhu M, Ashjian P, De Ugarte DA, Huang JI, Mizuno H, Alfonso ZC, et al. Human Adipose Tissue is a Source of Multipotent Stem Cells. Mol Biol Cell. 2002; 13:4279-4295.

Lim JS, Yoo G. Effects of Adipose-derived stromal cells and of their Extract on Wound Healing in a Mouse Model. J Korean Med Sci. 2010;25:746-751.

Bertozzi N, Simonacci F, Grieco MP, Grignaffini E, Raposio E. The biological and clinical basis for the use of adipose-derived stem cells in the field of wound healing. Ann Med Surg. 2017;20:41e – 48.

Na YK, Ban JJ, Lee M, Im W, Kim M. Wound healing potential of adipose tissue stem cell extract. Biochem Biophys Res Commun. 2017;485:30e-34.

Marfia G, Navone SE, Di Vito C, Ughi N, Tabano S, Miozzo M, et al. Mesenchymal stem cells: potential for therapy and treatment of chronic nonhealing skin wounds. Organogenesis. 2015;11:183-206.

Hur W, Lee HY, Min HS, Wufuer M, Lee CW, Hur JA, et al. Regeneration of full-thickness skin defects by differentiated adipose-derived stem cells into fibroblast-like cells by fibroblast- conditioned medium. Stem Cell ResTher. 2017;8:92.

Witten CM, McFarland RD, Simek SL. Concise Review: The U.S Food and Drug Administration and Regenerative Medicine. Stem Cells Transl Med. 2015;4:1495-1499.

Turner L. US stem cell clinics, patient safety, and the FDA. Trends Mol Med. 2015; 21:271-273.

Sipp D, Turner L. U.S. Regulation of Stem Cells as Medical Products. Science. 2012; 338:1296-1297

Maccaroni E, Mele A, Del Rosso R, Malpazzi L. Clostebol acetate. Acta Cryst. 2011; E67:o1952-o1953.

MacDonald RH, Beck M. Neomycin: a review with particular reference to dermatological usage. Clin Exp Dermatol. 1983;8:249-258.

Wolfensohn S, Lloyd M. Handbook of laboratory animal management and welfare, Third Edition. Oxford: Blackwell Publishing, 2003.

Kim WS, Park BS, Sung JH, Yang JM, Parks SB, Kwak SJ, et al. Wound healing effect of adipose-derived stem cells: a critical role of secretory factors on human dermal fibroblasts. J Dermatol Sci. 2007;48:15-24.

Altman AM, Matthias N, Yan Y, Song YH, Bai X, Chiu ES, et al. Dermal matrix as a carrier for in vivo delivery of human adipose-derived stem cells. Biomaterials. 2008; 29:1431-1442.

Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, Huang J, Futrell JW, Katz AJ, et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng. 2001; 7:211-28.

Yoshimura K, Shigeura T, Matsumoto D, Sato T, Takaki Y, Aiba-Kojima, et al. Characterization of freshly isolated and cultured cells derived from the fatty and fluid portions of liposuction aspirates. J Cell Physiol. 2006;208:64-76.

Worthy G. Statistical analysis and reporting: common errors found during peer review and how to avoid them. Swiss Med Wkly. 2015;145:w14076.

Wu Y, Chen L, Scott PG, Tredget EE. Mesenchymal stem cells enhance wound healing through differentiation and angiogenesis. Stem Cells. 2007;25:264859.

Badillo AT, Redden RA, Zhang L, Doolin EJ, Liechty KW. Treatment of diabetic wounds with fetal murine mesenchymal stromal cells enhances wound closure. Cell Tissue Res. 2007;329:301-311.

Lau K, Paus R, Tiede S, Day P, Bayal A, et al. Exploring the role of stem cells in cutaneous wound healing. Exp Dermatol. 2009;18:921-933.

Chen L, Tredget EE, Wu PY, Wu Y. Paracrine factors of mesenchymal stem cells recruit macrophages and endothelial lineage cells and enhance wound healing. PLoS One. 2008;3:e1886.

Gimble JM, Katz AJ, Bunnell BA. Adipose-Derived Stem Cells for Regenerative Medicine. Cir Res. 2007;100:1249-1260.

Stoff A, Rivera AA, Sanjib Banerjee N, Moore ST, Michael Numnum T, Espinosa-de-Los-Monteros A et al. Promotion of incisional wound repair by human mesenchymal stem cell transplantation. Exp Dermatol. 2009;18:362369.

Lee EY, Xia Y, Kim WS, Kim MH, Kim TH, Kim KJ, et al. Hypoxia-enhanced wound healing function of adipose-derived stem cells: Increase in stem cell proliferation and up-regulation of VEGF and Bfgf. Wound Repair Regen. 2009;17:540-547.

Cao Y, Sun Z, Liao L, Meng Y, Han Q, Zhao RC. Human adipose tissue-derived stem cells differentiate into endotelial cells in vitro and improve postnatal neovascularitation in vivo. Biochem Biophys Res Commun. 2005;332:370379.

Planat-Benard V, Silvestre JS, Cousin B, André M, Nibbelink M, Tamara R, et al. Plasticity of human adipose lineage cells toward endothelial cells: physiological and therapeutic perspectives. Circulation. 2004;109:656-663.

Moon MH, Kim SY, Kim YJ, Kim SJ, Lee JB, Bae YC, et al. Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells improve postnatal neovascularization in a mouse model of hindlimb ischemia. Cell Physiol Biochem. 2006;17:279-290.

Fu X, Li H. Mesenchymal stem cells and skin wound repair and regeneration:

possibilities and questions. Cell Tissue Res. 2009;335:317-321.

Descargas

Publicado

2018-01-04 — Actualizado el 2018-01-04

Versiones

Cómo citar

Sánchez, F. Z., Jiménez, Édgar M., Hernández, J. A., Piedra, S. C., Urhan, A. S., Aguilar, M. A., & Matamoros, O. M. (2018). Valoración de la tasa de cicatrización de una úlcera aguda en ratas Sprague-Dawley, mediante la aplicación de células madre mesenquimatosas autólogas, obtenidas del tejido adiposo. Acta Médica Costarricense , 60(1), 27-34. https://doi.org/10.51481/amc.v60i1.989